PMC

, Author

Eredmények és viták

A fénymikroszkópos képek a 2. ábrán láthatók. A test szegmentálatlan, hosszúkás ovális alakú. A kifejlett parazitáknak négy pár lába van. A nőstény paraziták átlagos hossza és szélessége 1,13 mm × 0,63 mm volt. A pásztázó elektronmikroszkópos vizsgálat kimutatta, hogy a hátpajzs keskeny, a hátsó oldal felé keskenyedik és tompa csúcsban végződik (3a. ábra). A dorzális pajzson 11 pár szőrszál található. A hátpajzson lévő szőrszálak hossza megegyezik a környező terület szőrszálainak hosszával. A nőstény atkák ventrális felszínén három pajzs található, a szegycsonti pajzs, a genitális pajzs és az anális pajzs (3b. ábra). A gnathosoma a chelicera és a pedipalp (4a. ábra). A chelicera hosszú és hegyes, ami fénymikroszkópos vizsgálat során laktofenollal tisztított fénymikroszkópban jól látható (2. ábra). A pedipalp minden trochanterének anteroventralis keelje van. A tritosternum hosszú és fogazott (4a. ábra). A szegycsont pajzsán három pár szőrös szita található (4b. ábra), amelyek közül az elülső pár közelebb van a pajzs elülső pereméhez. A genitális pajzson egy pár genitális szőrszál található (4b. ábra). Az anális pajzsnak három szőrszála van. A végbélnyílás az anális pajzs elülső felében található. Az anális pajzs hátsó részén nagyszámú, V alakban elhelyezkedő tüske található, amelyek közvetlenül a végálló anális szeta előtt húzódnak (4c. ábra). A pásztázó elektronmikroszkópiával megfigyelt fenti mikro-morfológiai jellemzők megegyeznek az O.bacoti Hirst, 1931-re vonatkozó, más publikált szakirodalmi leírásokkal (Watson 2008; Soulsby 1982; Engel et al. 1998). Bizonyos morfológiai jellemzők, nevezetesen a szőrösödés, a farok felől hegyes hátlemez, az anális lemez jellegzetes formája a koponyaalapi végbélnyílással lehetővé teszik a trópusi patkányatka megkülönböztetését más, közeli rokon parazitáktól, mint a vörös madáratka (Dermanyssus gallinae) és az északi madáratka (Ornithonyssus sylvarium) (Beck és Fölster-Holst 2009). A parazita fejlődési stádiumainak mikroszkópos vizsgálatáról alig van jelentés. Az Engel és munkatársai (1998) által e parazita életciklusáról készített áttekintés azonban információt nyújt az összes fejlődési stádium – beleértve a petéket, a lárvát, a protonymphát, a deutonymphát és a kifejlett egyedet – megkülönböztetéséhez morfológiai jellemzőik, azaz a lábak mérete és száma alapján. A pásztázó elektronmikroszkópia háromdimenziós képet készít egy tárgy felületi szerkezetéről. A fénymikroszkópia 1000-2000-szeresével szemben az elektronmikroszkópia nagyobb, akár 2 milliószoros felbontóképessége miatt lehetővé teszi a fénymikroszkópia által nem látható mikromorfológiai struktúrák vizsgálatát. Az elektronmikroszkópia azonban drága és szakértelmet igényel.

Light Microscopy image of ventral surface of O. bacoti, 40 × (a) and the gnathosoma showing two pedipalps and long chelicerae, 100 × (b)

SEM image of dorsal surface of O. bacoti, 40 × (a) and the gnathosoma showing two pedipalps and long chelicerae, 100 × (b)

SEM image of dorsal surface of O. bacoti hátpajzsát és szetáit (a), valamint a ventrális felszínen a szegycsonti, genitális és anális pajzsát (b)

SEM-kép az O. gnathosomáról. bacoti, amelyen a chelicera és a pedipalp (a), a szegycsonti pajzs 3 pár pilózus szetát (b) és az anális pajzs 3 anális szetát és a tüskék V alakú elrendezését mutatja (c)

Sok atkafaj, köztük a Sarcoptes scabiei, Notoedres cati, Cheyletiella spp, D. gallinae, O. bacoti, Ophionyssus natricis és Neotrombicula autumnalis megfertőzhetik az emberi bőrt, és tüneteket okozhatnak (Beck és Pfister 2006). Az atkák a táplálkozás során lerakódó nyálfehérjék révén viszketést vagy allergiás reakciót válthatnak ki (Scharf és Daly 2003). Az összes ízeltlábú csípésére, csípésére és termékeire adott általános túlérzékenységi reakciót papuláris csalánkiütésnek nevezik (Steen és mtsai. 2004). Az állatokban előforduló atkafajok okozhatnak átmeneti emberi fertőzöttséget. Az egyik ilyen ideiglenes emberi fertőzés az O. bacoti, más néven trópusi patkány atka. Az O. bacoti időszakos vérszívó parazita, és viszonylag rövid időt tölt a gazdaszervezeten. Amikor a patkányt csapdába ejtik, vagy elhagyja az életterét, az atka táplálék után kutatva fertőzést okozhat. A trópusi patkányatka előfordulásáról számos országban beszámoltak, kivéve a sarkvidéki és antarktiszi régiót (Engel et al. 1998).

Az antiparazita szerekkel való kezelés humán betegeknél nem szükséges, azonban ha indokolt, tüneti kezelést lehet biztosítani (Beck 2007). Különböző szerzők antihisztaminikum (Hetherington et al. 1971), glükokortikoidok (Fishman 1988), lindán (Fishman 1988) és 25 %-os benzil-benzoát (Tika Ram et al. 1986) alkalmazásáról számoltak be. Esetünkben csak antihisztaminos kezelést alkalmaztunk, csak kevés betegnél, mivel az általunk tapasztalt elváltozások súlyossága igen csekély volt. Néhány betegnél erős viszketést tapasztaltunk, ezért antihisztaminikumot írtunk fel. A viszketés az antihisztaminos gyógyszer hatására alábbhagyott, és az antihisztaminos gyógyszereket kapó betegeknél az elváltozások általában rövidebb idő alatt eltűnnek. A gyógyulás 5-10 napon belül eseménytelen volt.

A laboratóriumi állattartó telepeken egy átfogó irtóprogramnak ideális esetben magában kell foglalnia a komensális rágcsálók rezervoárjának megszüntetését, a fertőzött állatok és környezetük kezelését. Nem lehet azonban figyelmen kívül hagyni az újrafertőzést, ha a patkányirtó program kudarcot vall. Az épületek lebontása és felújítása vagy a komensális rágcsálók eltávolítása különösen kockázatos időszak, és új laboratóriumi rágcsáló atkafertőzéshez vezethet, mivel az atkák új gazdatestek keresésére indulnak (Watson 2008). Arról is beszámoltak, hogy az atka 2 héttől akár több hónapig is túlélhet táplálkozás nélkül (Baker 1998). A mi létesítményünkben a védekezési program magában foglalta a laboratóriumi állattartó telepen lévő commensel rágcsáló rezervoár kiirtását, a könnyen hozzáférhető deltametrin (Butox vet ®), egy piretroid csoportba tartozó ha rovarölő szer használatát a fertőzött kolónia és környezetének kezelésére (Nath et al. 2013). Más piretroid csoportba tartozó szereket, azaz a permetrint, egy szintetikus piretroidot (Hill et al. 2005, Cole et al. 2005), önmagában vagy tartósan felszabaduló deltametrinnel kombinálva (Watson 2008) sikeresen alkalmazták a laboratóriumi egérkolónia fertőzöttségének kezelésére.

Ez a vizsgálat arra a következtetésre jutott, hogy a laboratóriumi állattartó létesítményben dolgozó személyzet bőrgyulladásos esetei a fertőzött egérkolóniából származó O. bacoti csípése miatt alakultak ki. A pásztázó elektronmikroszkópia hasznos volt a parazita azonosításának megerősítéséhez a mikromorfológiai struktúrák vizsgálata alapján. Indiában kevés információ áll rendelkezésre az O. bacoti-fertőzés és az O. bacoti által okozott bőrgyulladás előfordulására vonatkozóan. Bár nem állnak rendelkezésre feljegyzett esetek, ennek az atkának a betegség átvitelében rejlő lehetőségét komolyan kell venni. A viszketés súlyosságának csökkentésében szükség szerint tüneti kezelés segíthet.

Vélemény, hozzászólás?

Az e-mail-címet nem tesszük közzé.