Risultati e discussioni
Le immagini della microscopia ottica sono presentate in Fig. 2. Il corpo è non segmentato, di forma ovale allungata. I parassiti adulti hanno quattro paia di zampe. La lunghezza media e la larghezza dei parassiti femmina erano 1,13 mm × 0,63 mm. La microscopia elettronica a scansione ha rivelato che lo scudo dorsale è stretto e si assottiglia verso il lato posteriore e termina con una punta smussata (Fig. 3a). Ci sono 11 paia di setae pilose sullo scudo dorsale. La lunghezza delle setole sullo scudo dorsale era uguale alle setole della zona circostante. La superficie ventrale degli acari femmina ha tre scudi, scudo sternale, scudo genitale e scudo anale (Fig. 3b). Lo gnatosoma ha cheliceri e pedipalpi (Fig. 4a). La chelicera è lunga e appuntita che è molto chiaramente visibile al microscopio ottico, schiarita durante la lavorazione con lattofenolo (Fig. 2). Ogni trocantere del pedipalpo ha una chiglia anteroventrale. Il tritosterno è lungo e seghettato (Fig. 4a). Lo scudo sternale ha tre paia di setae pilose (Fig. 4b) di cui la coppia anteriore è più vicina al margine anteriore dello scudo. Lo scudo genitale ha un paio di setole genitali (Fig. 4b). Lo scudo anale ha tre setole. L’ano si trova nella metà anteriore dello scudo anale. La parte posteriore dello scudo anale ha un gran numero di spine disposte a forma di V che si estendono appena davanti alla seta anale terminale (Fig. 4c). Le caratteristiche micro-morfologiche di cui sopra come osservato da microscopia elettronica a scansione è come per le descrizioni di altra letteratura pubblicata per O.bacoti Hirst, 1931 (Watson 2008; Soulsby 1982; Engel et al. 1998). Alcune caratteristiche morfologiche come la pelosità, la piastra dorsale caudalmente appuntita, la forma tipica della piastra anale con un ano craniale permettono di differenziare l’acaro dei ratti tropicali da altri parassiti strettamente correlati come l’acaro rosso degli uccelli (Dermanyssus gallinae) e l’acaro nordico degli uccelli (Ornithonyssus sylvarium) (Beck e Fölster-Holst 2009). Ci sono pochi rapporti sulla microscopia degli stadi di sviluppo del parassita. Tuttavia, la revisione sul ciclo di vita di questo parassita da parte di Engel et al. (1998) fornisce informazioni per differenziare tutti gli stadi di sviluppo tra cui uova, larva, protoninfa, deutoninfa e adulto in base ai loro caratteri morfologici, cioè dimensioni e numero di zampe. La microscopia elettronica a scansione crea un’immagine tridimensionale della struttura superficiale di un oggetto. A causa della sua maggiore capacità di risoluzione fino a 2 milioni di volte, rispetto a 1.000-2.000 volte nella microscopia ottica, la microscopia elettronica permette lo studio di strutture micromorfologiche non visibili dalla microscopia ottica. Tuttavia, la microscopia elettronica è costosa e ha bisogno di esperienza.
Immagine al microscopio ottico della superficie ventrale di O. bacoti, 40 × (a) e lo gnatosoma che mostra due pedipalpi e lunghi cheliceri, 100 × (b)
Immagine SEM della superficie dorsale di O. bacoti che mostra lo scudo dorsale e le setae (a) e la superficie ventrale che mostra lo scudo sternale, genitale e anale (b)
Immagine SEM dello gnatosoma di O. bacoti che mostra il chelicero e il pedipalpo (a), lo scudo sternale che mostra 3 paia di setole pilose (b) e lo scudo anale che mostra 3 setole anali e una disposizione a V delle spine (c)
Diverse specie di acari tra cui Sarcoptes scabiei, Notoedres cati, Cheyletiella spp, D. gallinae, O. bacoti, Ophionyssus natricis e Neotrombicula autumnalis possono infestare la pelle umana, causando sintomi (Beck e Pfister 2006). Gli acari possono produrre pruriti o reazioni allergiche attraverso le proteine salivari depositate durante l’alimentazione (Scharf e Daly 2003). La reazione di ipersensibilità comune a tutti i morsi di artropodi, punture e prodotti è indicata come orticaria papulare (Steen et al. 2004). Le specie di acari che si trovano negli animali possono essere la causa di un’infestazione umana temporanea. Una di queste infestazioni temporanee nell’uomo si verifica nel caso di O. bacoti, altrimenti noto come acaro dei ratti tropicali. O. bacoti è un parassita periodico ematofago e trascorre un tempo relativamente breve su un ospite. Quando il ratto viene intrappolato, o ha abbandonato il suo spazio vitale, l’acaro può causare l’infestazione in cerca di cibo. L’acaro dei ratti tropicali è stato riportato in molti paesi eccetto la regione artica e antartica (Engel et al. 1998).
Non è necessaria una terapia con agenti antiparassitari nei pazienti umani, tuttavia, se indicato, può essere fornito un trattamento sintomatico (Beck 2007). Diversi autori hanno riportato l’uso di farmaci antistaminici (Hetherington et al. 1971), glucocorticoidi (Fishman 1988), lindano (Fishman 1988), e benzoato di benzile al 25% (Tika Ram et al. 1986). Nel nostro caso, abbiamo usato il solo trattamento antistaminico, solo in pochi pazienti, poiché la gravità delle lesioni riscontrate era molto ridotta. Alcuni dei pazienti hanno sperimentato un forte prurito, per cui è stato prescritto un farmaco antistaminico. Il prurito è diminuito in seguito alla somministrazione di un farmaco antistaminico e le lesioni tendono a scomparire in un periodo più breve nei pazienti a cui sono stati somministrati farmaci antistaminici. Il recupero è stato senza problemi in un periodo di 5-10 giorni.
Nelle strutture per animali da laboratorio un programma completo di eradicazione dovrebbe idealmente includere l’eliminazione del serbatoio di roditori commensali, trattando gli animali infestati e il loro ambiente. Tuttavia, la reinfestazione non può essere ignorata se il programma di controllo dei ratti fallisce. La demolizione e la ristrutturazione degli edifici o la rimozione dei roditori commensali sono periodi particolarmente ad alto rischio e possono portare a nuove infestazioni da acari dei roditori da laboratorio, poiché gli acari viaggiano alla ricerca di nuovi ospiti (Watson 2008). E’ stato anche riportato che l’acaro può sopravvivere da 2 settimane a diversi mesi senza nutrirsi (Baker 1998). Il programma di controllo nella nostra struttura comprendeva l’eradicazione del serbatoio di roditori commensali nella struttura degli animali da laboratorio, l’uso di deltametrina facilmente disponibile (Butox vet ®), un insetticida piretroide del gruppo se, per trattare la colonia infestata e il suo ambiente (Nath et al. 2013). Altro gruppo piretroide di farmaci, cioè permetrina, un piretroide sintetico (Hill et al. 2005, Cole et al. 2005), da solo o in combinazione con deltametrina a rilascio prolungato (Watson 2008) sono stati utilizzati con successo per trattare l’infestazione in una colonia di topi da laboratorio.
Questo studio ha concluso che i casi di dermatite nel personale che lavora nella struttura di animali da laboratorio era dovuto ai morsi di O. bacoti che proveniva da colonia di topi infestati. La microscopia elettronica a scansione è stata utile per confermare l’identificazione del parassita sulla base degli studi delle strutture micromorfologiche. In India, ci sono informazioni limitate sul verificarsi di infestazioni e dermatiti causate da O. bacoti. Anche se non sono disponibili casi registrati, il potenziale di questo acaro nella trasmissione della malattia deve essere considerato seriamente. Il trattamento sintomatico, come e quando richiesto, può essere utile per ridurre la gravità del prurito.