細胞増殖

, Author

細胞分裂、成長 & 増殖

細胞増殖とは、細胞質、核、オルガネラの両方を含む細胞の総量が増加することを指します。 細胞成長は、細胞の生合成(生体分子の生産または同化)の全体速度が、細胞の分解(プロテアソーム、リソソームまたはオートファジーによる生体分子の破壊、または異化)の全体速度よりも大きい場合に生じる。

細胞増殖は、細胞分裂または細胞周期と混同してはならない。これらは、「母細胞」として知られる細胞が成長し、分裂して2つの「娘細胞」を生み出す細胞増殖の過程で、細胞増殖と同時に起こり得る別個のプロセスである。 重要なことは、細胞増殖と細胞分裂は、互いに独立して起こることもあるということです。 初期の胚発生(接合子が切断され、モルラや胚盤胞が形成される)では、細胞分裂は細胞成長とは無関係に繰り返し行われる。 逆に、神経系の発生における軸索誘導時の神経細胞の成長など、細胞分裂を伴わず、あるいは細胞周期を一切進行させずに成長する細胞も存在する。

胚の裂開の際に細胞成長を伴わない細胞分裂

多細胞生物では、組織の成長は細胞分裂のない細胞成長のみによって起こることは少なく、ほとんどの場合細胞増殖によって起こる。 これは、細胞核にゲノムを1コピーしか持たない1個の細胞は、生合成を行うことができるため、2個の細胞の半分の速度でしか細胞増殖を行わないからである。 したがって、2つの細胞は1つの細胞の2倍の速度で、4つの細胞は1つの細胞の4倍の速度で成長(物質が蓄積)することになる。

細胞の大きさは、細胞増殖と細胞分裂の両方に依存し、細胞増殖の割合が不均衡に増加すると大きな細胞が生成され、細胞分裂の割合が不均衡に増加すると多くの小さな細胞が生成されるようになる。

いくつかの特殊な細胞は、S期にゲノムが複製されるが、その後の有糸分裂(M期)や細胞分裂(サイトキネシス)がない、珍しい「エンドレプリケーション」細胞周期によって非常に大きなサイズまで成長することができる。

卵母細胞は、胚発生が母親の体から離れた場所にある卵の中で行われる種では、異常に大きな細胞になることがあります。 卵の大きさは、隣接する細胞からリングカナルと呼ばれる細胞質橋を通して細胞質成分を送り込む方法(ショウジョウバエ)と、エンドサイトーシスによって栄養貯蔵顆粒(卵黄顆粒)を内包する方法(カエル)のいずれかによって達成されることがある。

細胞成長制御のメカニズム

細胞は、生体分子の生産がプロテアソーム、リソソームまたはオートファジーによる生体分子の細胞内分解の全体速度を上回るように、細胞生合成の全体速度を高めることによって成長することが可能である。

生体分子の生合成は、脂質および炭水化物の合成を触媒する酵素を含むRNAおよび/またはタンパク質をコードする遺伝子の発現によって開始される。

個々の遺伝子は、一般にメッセンジャーRNA(mRNA)への転写およびタンパク質への翻訳を介して発現し、それぞれの遺伝子の発現が(遺伝子調節ネットワークに応答して)細胞型特異的に種々の異なるレベルに生じる。

細胞の成長を促進するために、RNAポリメラーゼIIによる転写の全体的な速度(活性遺伝子の場合)を高めることによって、あるいはRNAポリメラーゼIとRNAポリメラーゼIIIに生合成が依存するリボソームとtRNAの存在量を増やすことによって、タンパク質へのmRNAの翻訳速度全体を高めることが可能である。 Myc転写因子は、RNAポリメラーゼI、RNAポリメラーゼIIおよびRNAポリメラーゼIIIの全体的な活性を誘導して、グローバルな転写および翻訳を促進し、それによって細胞の成長を促すことができる調節タンパク質の一例である

さらに、個々のリボソームの活性は、「翻訳伸長開始因子4E」(eIF4E)複合体を含む翻訳開始因子の調節を通じてmRNA翻訳のグローバルな効率を高めることができるが、mRNAの5’端に結合してキャップを付けることができる。 TORは、TORC1複合体の一部であり、翻訳開始およびリボソーム生合成の上流制御因子として重要である。 TORはセリン・スレオニンキナーゼであり、4E-binding protein(4E-BP)というeIF4Eの阻害剤を直接リン酸化して不活性化し、翻訳効率を促進することができる。 また、TORはリボソームタンパク質S6-kinase(S6K)を直接リン酸化して活性化し、リボソーム生合成を促進する。

細胞の増殖を抑制するためには、オートファジーの速度を上げることによって、全体的に遺伝子発現速度を低下させたり、生体分子分解の速度を上昇させたりすることが可能である。 TORは通常、オートファジー誘導キナーゼであるAtg1/ULK1の機能を直接阻害している。 したがって、TOR活性を低下させることは、グローバルな翻訳速度を低下させ、かつオートファジーの程度を増加させて、細胞増殖を抑制することの両方となる。

動物の細胞増殖制御

細胞の増殖を制御するシグナル分子の多くは成長因子と呼ばれ、その多くはPI3K/AKT/mTOR経路を介してシグナル伝達を誘導し、上流の脂質キナーゼPI3Kと下流のセリン/スレオニンタンパクキナーゼAktは、別のタンパク質キナーゼTORを活性化して、細胞増殖を促進しオートファジーを阻害できるようになっています。

栄養の入手可能性は、動物のホルモンとして循環するインスリン/IGF-1ファミリーの成長因子の産生に影響を与え、細胞内のPI3K/AKT/mTOR経路を活性化してTOR活性を促進するので、動物に十分な栄養が与えられると急速に成長し、栄養が足りなくなると成長速度が低下することになります。

さらに、個々の細胞へのアミノ酸の供給状況もTOR活性を直接促進するが、この調節様式は、常に豊富なアミノ酸が循環している動物のような多細胞生物よりも、単細胞生物においてより重要である。

論争となっているある理論は、細胞周期中に多くの異なる哺乳類細胞がサイズ依存的に遷移すると提唱している。 Cdk1を制御するタンパク質はよく理解されているが、細胞のサイズを監視するメカニズムとの関連はまだ解明されていない。哺乳類のサイズ制御の仮説モデルは、質量が細胞周期の駆動力であるとするものである。 哺乳類のサイズコントロールの仮定されたモデルは、細胞質量を細胞周期の駆動力として位置づけ、細胞が異常に大きくなることができないのは、ある細胞サイズまたは細胞質量になるとS期が開始されるからである。 S期は、有糸分裂と細胞質分裂につながる一連のイベントを開始する。 1528>

細胞集団

細胞集団は、倍加または細胞増殖と呼ばれる特定のタイプの指数関数的な成長を経る。 したがって、細胞の各世代は前の世代の2倍の数になるはずである。 しかし、すべての細胞が各世代で生き残るわけではないので、世代数は最大値を示すに過ぎない。 細胞の大きさ

細胞の大きさは生物によって大きく異なり、Caulerpa taxifoliaのような長さ数メートルの藻類は1つの細胞である。 植物細胞は動物細胞よりはるかに大きく、ゾウリムシのような原生生物は長さ330μmにもなり、人間の典型的な細胞は10μmかもしれない。 これらの細胞が、分裂する前にどのように大きさを「決定」しているのかは、未解決の問題である。 化学的勾配が一因であることが知られているが、細胞骨格構造による機械的ストレスの検出が関与しているのではないかと推測されている。

酵母の細胞サイズ調節

酵母では細胞サイズと細胞分裂の関係が広く研究されている。 いくつかの細胞では、細胞がある大きさにならないと細胞分裂が始まらないというメカニズムが存在する。 栄養供給が制限され(下図の時間t=2以降)、細胞サイズの増加速度が遅くなると、細胞分裂の間隔が長くなる。 酵母の細胞サイズ変異体として、正常/規則的なサイズに達する前に細胞分裂を開始するもの(wee変異体)を単離した。

図1:細胞周期と成長

Wee1タンパク質は通常チロシン残基にサイクリン依存キナーゼであるCdc2細胞周期調節タンパク質(ヒトのCDK1の相同物)のリン酸化をするチロシンキナーゼである。 Cdc2は、さまざまな標的をリン酸化することで、有糸分裂への参入を促す。 この共有結合による分子構造の改変は、Cdc2の酵素活性を阻害し、細胞分裂を阻止する。 Wee1は、細胞がまだ小さいG2初期にCdc2を不活性に保つように働く。 G2期に細胞が十分な大きさになると、リン酸化酵素Cdc25が阻害的なリン酸化を除去するため、Cdc2が活性化され、有糸分裂への参入が可能になる。 細胞サイズの変化に伴うWee1とCdc25の活性のバランスが、有糸分裂突入制御系によって調整されている。 Wee1変異体、つまりWee1活性が弱まった細胞では、細胞が小さくなるとCdc2が活性化されることが示されている。 そのため、酵母が通常の大きさになる前に有糸分裂が起こる。 このことは、細胞分裂は、細胞が大きくなるにつれて、細胞内のWee1タンパク質の希釈によって一部制御されている可能性を示唆している。

Cdr2とWee1の関連付け

プロテインキナーゼCdr2(Wee1を負に制御)とCdr2関連キナーゼCdr1(in vitroで直接Wee1リン酸化し阻害)は間期細胞中央の皮質節というバンドに局在している。 有糸分裂開始後、ミオシンIIなどの細胞質分裂因子は同様のノードに集められ、これらのノードは最終的に凝縮して細胞質分裂リングを形成する。 これまで知られていなかったタンパク質Blt1が、間期細胞中央のノードにおいてCdr2と共局在することが明らかになった。 Blt1ノックアウト細胞では、分裂時の長さが長くなっており、これは有糸分裂の開始が遅れていることと矛盾しない。 1528>

さらにGFPタグ付きタンパク質や変異タンパク質を用いた実験から、内側皮質ノードは、間期中に相互作用する複数のタンパク質がCdr2依存的に秩序立てて集合することによって形成されることが示された。 Cdr2はこの階層の最上流に位置し、Cdr1やBlt1の上流で機能している。 有糸分裂は、Cdr2によるWee1の負の制御によって促進される。 また、Cdr2がWee1を内側皮質結節にリクルートしていることも明らかにされている。 この動員機構はまだ解明されていない。 リン酸化の機能喪失にもかかわらず正しく局在できるCdr2キナーゼ変異体は、Wee1の内側皮質へのリクルートが阻害され、有糸分裂への移行が遅れることが分かっている。 このように、Wee1はその抑制ネットワークとともに局在することから、有糸分裂はCdr2依存的に内側皮質の節でWee1の負の制御を受けていることが示された。

細胞極性因子

細胞先端に位置する細胞極性因子は、Cdr2の細胞中央への分布を制限する空間的手がかりを提供する。 分裂酵母Schizosaccharomyces pombe(S.Pombe)では、Cdk1の活性が制御されているため、細胞は有糸分裂の際に決められた再現性のある大きさで分裂する。 細胞極性タンパク質キナーゼPom1は、キナーゼ群のDYRK(Dual Specificity Tyrosine-Posphorylation Regulated kinase)ファミリーのメンバーで、細胞の端に局在している。 Pom1ノックアウト細胞では、Cdr2は細胞中央部に限定されなくなり、細胞の半分に拡散して見られるようになった。 このデータから、Pom1はCdr2を細胞の中央に閉じ込める抑制シグナルを与えていることが明らかになった。 さらに、Pom1依存的なシグナルがCdr2のリン酸化を引き起こすことも明らかになった。 Pom1ノックアウト細胞は野生型よりも小さなサイズで分裂することも示され、これは有糸分裂への早期参入を示している。

Pom1 は細胞末端でピークとなる極性勾配を形成し、サイズ制御因子と細胞内の特定の物理的位置が直接結びついていることが示される。 細胞が大きくなるにつれて、Pom1の勾配は大きくなる。 細胞が小さいときには、Pom1は細胞体全体にびまん性に広がっている。 細胞が大きくなるにつれて、Pom1の濃度は中央部で減少し、細胞末端で濃縮されるようになる。 G2初期の小さな細胞で、細胞全体に十分な量のPom1が存在する場合は、Cdr2が不活性であり、有糸分裂に入ることができない。 細胞が成長してG2後期になり、Pom1が細胞末端に限局されるようになって初めて、内側皮質節のCdr2が活性化され、Wee1の抑制を開始できるようになる。 この発見は、細胞の大きさが有糸分裂の開始を制御する上で直接的な役割を担っていることを示している。 このモデルでは、Pom1はCdr2-Cdr1-Wee1-Cdk1経路を通じて、細胞の成長と有糸分裂の開始をつなぐ分子として働いていることがわかる。 Pom1の極性勾配は、細胞のサイズと形状に関する情報をCdk1制御系にうまく中継している。 この勾配を通じて、細胞は有糸分裂に入るために定義された十分なサイズに達したことを確認する。

細胞サイズ調節の研究のための他の実験システム

非常に大きな細胞を作り出す一般的な手段の1つは、細胞融合によるシンシティアを形成することである。 例えば、非常に長い(数インチ)骨格筋細胞は、数千の筋細胞の融合によって形成される。 ショウジョウバエの遺伝子研究により、筋芽細胞の融合による多核筋細胞の形成に必要な遺伝子がいくつか明らかにされている。 植物細胞の大きさの増大は、ほとんどすべての植物細胞が固い細胞壁の中にあるという事実によって、複雑になっている。

ほとんどの単細胞生物は微小ですが、肉眼で見える巨大な細菌や原生動物もいます。 ご覧ください。 細胞サイズの表-ナミビア棚堆積物中の巨大硫黄細菌の密な集団-アメーバ属に近縁のカオス属の大型原生生物

棒状細菌の大腸菌、カーロバクター・クレセントス、枯草菌の細胞サイズは、前回の分裂から一定量を加えた後に細胞分裂が起こるという単純なメカニズムで制御されています。 常に同じ量だけ成長することで、平均より小さく生まれたり大きく生まれたりした細胞は、各世代で加えられた量と同じ平均サイズに自然に収束していく。 細胞のほとんどの構成要素にとって、成長は安定した連続的なプロセスであり、核とそれから細胞が2つに分裂するM期で一時的に中断されるだけである。

細胞分裂のプロセスは、細胞周期と呼ばれ、相と呼ばれる4つの主要な部分を持っている。 G1期と呼ばれる最初の部分は、DNA複製に必要な様々な酵素の合成によって特徴付けられる。細胞周期の第2部分はS期で、DNA複製によって2組の同じ染色体が作られる。 第4期のM期は、核分裂(カリオキネシス)と細胞質分裂(サイトキネシス)からなり、新しい細胞膜の形成を伴います。 これは、「母」細胞と「娘」細胞の物理的な分裂である。 M相はいくつかの異なる相に分解され、順次プロフェーズ、プロメタフェーズ、メタフェーズ、アナフェーズ、テロフェーズと呼ばれ、細胞質分裂に至る。

真核生物では他の生物より細胞分裂が複雑である。 細菌細胞などの原核細胞は、DNA複製、染色体分離、細胞質分裂を含むプロセスである二元分裂によって生殖する。 真核生物の細胞分裂には、有糸分裂と、減数分裂と呼ばれるより複雑なプロセスがある。 有糸分裂と減数分裂は、2つの「核分裂」プロセスと呼ばれることもある。 二体核分裂は、有糸分裂を伴う真核生物の細胞生殖と似ている。 どちらも親細胞と同じ数の染色体を持つ2つの娘細胞が作られることになる。 減数分裂は、2倍体の生物の特殊な細胞生殖プロセスに用いられる。 通常の細胞の半分の量のDNAを持つ4つの特別な娘細胞(配偶子)が作られる。

この後は、二体核分裂、有糸分裂、減数分裂の3種類の細胞生殖の主な特徴を比較します。 下の図は、これら3種類の細胞生殖の類似点と相違点を表したものです。

細胞増殖

3種類の細胞分裂の比較

細胞生殖プロセスの開始時に、細胞のDNA内容は複製される。 DNA複製前の細胞のDNA量はZ(細胞はZ本の染色体を持っている)と表すことができます。 DNA複製後の細胞のDNA量は2Z(掛け算:2×Z=2Z)となります。 二元分裂と有糸分裂では、複製された親細胞のDNAは2等分され、2つの娘細胞に受け継がれる運命にあります。 細胞の再生過程の最終段階は細胞分裂であり、娘細胞が親細胞から物理的に分離される。 減数分裂では、2つの細胞分裂のステップがあり、合わせて4つの娘細胞が作られる。

二元分裂または有糸分裂を伴う細胞再生が完了すると、各娘細胞は親細胞がDNAを複製する前に持っていたものと同じ量のDNA(Z)を持つようになる。 この2種類の細胞生殖では、親細胞と同じ数の染色体を持つ2つの娘細胞が作られます。 染色体は、生殖のために新しい皮膚細胞を形成する際、細胞分裂の前に複製される。 減数分裂の後、4つの娘細胞は、親細胞がもともと持っていた染色体の数の半分を持つ。 減数分裂は、2倍体の生物が4倍体の配偶子を作るために行われる。 ヒトのような2倍体の生物では、体のほとんどの細胞が2倍体のDNA量である2Nを持っています。 この染色体の数え方を用いて、ヒトの体細胞は46本の染色体を持ち(2N=46)、ヒトの精子と卵子は23本の染色体を持つ(N=23)と言うことができます。 ヒトの染色体は、22本の常染色体と、特殊なカテゴリーである性染色体の23種類に分かれます。 性染色体には、X染色体とY染色体の2種類があります。 2倍体のヒトの細胞は、その人の父親から23本、母親から23本の染色体を持っています。

染色体

DNAが複製された直後のヒトの細胞には46本の「二重染色体」が存在します。 それぞれの二重染色体には、その染色体のDNA分子が2本ずつ入っています。 有糸分裂の際に二重染色体は分割され、92本の「単染色体」が作られ、その半分がそれぞれの娘細胞に入ります。

有性生殖

Main article: 性の進化
さらに詳しい情報。 減数分裂の起源と機能、相同組換え

有糸分裂を利用した細胞生殖でも真核細胞の再生は可能ですが、真核生物は減数分裂のような有性生殖が選択的に有利なため、より複雑なプロセスをわざわざ行っているのです。 減数分裂が始まると、姉妹染色分体2番の2つのコピーが互いに隣接していることに注目してください。 この間、遺伝子の組み替えが起こる可能性があります。 片方の親から受け取った2番染色体DNA(赤)の情報は、もう片方の親から受け取った2番染色体DNA分子(緑)に引き継がれます。 有糸分裂の際には、2番染色体の2つのコピーは相互作用しないことに注意してください。 減数分裂の際に相同染色体間で行われる遺伝情報の組み換えは、DNAの損傷を修復するためのプロセスです。 この過程はまた、新しい遺伝子の組み合わせを生み出すこともあり、その中には適応的に有益で進化の過程に影響を与えるものもある。 しかし、主要なライフサイクルの段階で2組以上の染色体を持つ生物では、ランダムな交配のもとで、ハーディーワインバーグ比にしたがってホモ接合体とヘテロ接合体を生み出すため、性は優位性をもたらすこともある。

障害

一連の成長障害は細胞レベルで起こりうるもので、これらは結果として、一群の細胞が正常な限界を超えた無秩序な成長と分裂、侵襲(隣接組織への侵入と破壊)、時には転移(リンパや血液を介して体内の他の場所への転移)を示す癌のその後の過程の大部分を支えることになる。 腫瘍では、倍数体や細胞代謝の調節など、細胞増殖のいくつかの重要な決定因子が共通して破壊されている。 したがって、不均一な細胞増殖や多形性は、癌の進行の最も初期の特徴の一つである。 ヒトの病理学において多形性は広く見られるにもかかわらず、疾患の進行におけるその役割は不明である。 上皮組織では、細胞の大きさの多形性は、パッキング欠陥を誘発し、異常な細胞を分散させることができる。 しかし、他の動物組織における非定型細胞増殖の結果は不明である。

測定方法

細胞増殖は様々な方法で検出できる。細胞サイズの増大は、適切な染色を用いて顕微鏡で視覚化できる。 しかし、細胞数の増加は通常、より顕著である。 これは、顕微鏡観察下で、トリパンブルーなどの色素排除法を用いて、生存している細胞のみをカウントし、手作業で測定することができる。 フローサイトメトリーでは、膜、細胞質、核の蛍光プローブにより、死細胞/生存細胞、細胞タイプ、細胞分化、Ki67などのバイオマーカーの発現を識別することが可能である。

これらのアッセイはすべて、細胞の成長条件や望ましい側面(活性、増殖)によって、うまく相関することもあれば、しないこともある。 この作業は、異なる細胞の集団、さらに細胞増殖の妨害や毒性を併せ持つ場合には、さらに複雑になる。

  • 細菌増殖
  • 二元分裂
  • 細胞周期
  • クローン(遺伝学)
  • も参照してください。

  • 発生生物学
  • 減数分裂
  • 多形性
  • 幹細胞
  1. ^ a b c Conlon, イアン Raff, Martin (1999). 「動物の発生におけるサイズコントロール”. Cell. 96 (2): 235-244. doi:10.1016/S0092-8674(00)80563-2. issn 0092-8674. PMID 9988218. S2CID 15738174.
  2. ^ Grewal, Savraj S; Edgar, Bruce A (2003). このような場合、「細胞分裂を制御する」ことが重要です。 生物学のジャーナル。 2 (1): 5. doi:10.1186/1475-4924-2-5. issn 1475-4924. PMC 156596. PMID 12733996.
  3. ^ Neufeld, Thomas P; de la Cruz, Aida Flor A; Johnston, Laura A; Edgar, Bruce A (1998). このような場合、「翅の成長と細胞分裂の調整」(Coordination of Growth and Cell Division in the Drosophila Wing) と呼ばれる。 Cell. 93 (7): 1183-1193. doi:10.1016/S0092-8674(00)81462-2. issn 0092-8674. PMID 9657151. S2CID 14608744.
  4. ^ Thompson, Barry J. (2010). 「ショウジョウバエの細胞増殖・分裂の発生制御”. 細胞生物学におけるカレントオピニオン。 22 (6): 788-794. doi:10.1016/j.ceb.2010.08.018. PMID 20833011.
  5. ^ Hafen, E. (2004). 「成長因子と栄養素のシグナルの相互作用。 Drosophila TORからの教訓”. TOR. Current Topics in Microbiology and Immunology. 279. 153-167. doi:10.1007/978-3-642-18930-2_10. ISBN 978-3-642-62360-8. issn 0070-217x. PMID 14560957.
  6. ^ Mitchison JM (2003). “細胞周期中の成長”。 Int. Rev. Cytol. 細胞学の国際的なレビュー。 226: 165-258. doi:10.1016/S0074-7696(03)01004-0. ISBN 978-0-12-364630-9. PMID 12921238。
  7. ^ Cooper, Stephen (2004). 「哺乳類細胞の大きさの制御と維持”. BMCセルバイオロジー。 5 (1): 35. doi:10.1186/1471-2121-5-35. PMC 524481. PMID 15456512.
  8. ^ Peplow, Mark (23 March 2005). “Algae create glue to repair cell damage” (藻類が細胞の損傷を修復する糊を作る)。 Nature.com. 2016年7月4日に取得した。
  9. ^ Slavov N.; Botstein D. (2011年6月). “酵母の成長速度応答、代謝サイクル、細胞分裂サイクルの間のカップリング”. Molecular Biology of the Cell. 22 (12): 1997-2009. doi:10.1091/mbc.E11-02-0132. PMC 3113766. PMID 21525243.
  10. ^ S. pombeのWee1変異体は細胞サイズが小さく、ヒトの相同タンパク質は有糸分裂への細胞侵入も制御する;Lodish HF, Berk A, Zipursky LS, Matsudaira P, et al, eds. (2000). 分子細胞生物学(第4版). New York: W.H. Freeman. ISBN 978-0-7167-3136-8.
  11. ^ Wu L, Russell P (1993年6月). 「Nim1キナーゼはWee1チロシンキナーゼを不活性化することによって有糸分裂を促進する”. Nature. 363 (6431): 738-41. Bibcode:1993Natur.363..738W. doi:10.1038/363738a0. PMID 8515818. S2CID 4320080.
  12. ^ Wu JQ, Kuhn JR, Kovar DR, Pollard TD (November 2003). このように、細胞質分裂に伴う収縮環の形成と収縮の空間的・時間的経路を明らかにすることができたのは、「分裂酵母の細胞質分裂における収縮環の形成と収縮の空間的・時間的経路」である。 Dev. Cell. 5 (5): 723-34. doi:10.1016/S1534-5807(03)00324-1. PMID 14602073.
  13. ^ a b c d Moseley JB, Mayeux A, Paoletti A, Nurse P (2009年6月). このような場合、「細胞サイズ」と「有糸分裂の開始」を空間的な勾配で調整する。 Nature. 459 (7248): 857-60. Bibcode:2009Natur.459..857M. doi:10.1038/nature08074. PMID 19474789. S2CID 4330336.
  14. ^ Rupes I (September 2002). “Checking cell size in yeast” (酵母の細胞サイズの確認). Trends Genet. 18 (9): 479-85. doi:10.1016/S0168-9525(02)02745-2. PMID 12175809.
  15. ^ Padte NN, Martin SG, Howard M, Chang F (2006年12月). 「細胞端因子pom1pは分裂酵母の細胞分裂面の指定においてmid1pを阻害する”. Curr. 生物学 16 (24): 2480-7. doi:10.1016/j.cub.2006.11.024. PMID 17140794.
  16. ^ Menon SD, Osman Z, Chenchill K, Chia W (June 2005). 「DumbfoundedとRolling pebblesの間の正のフィードバックループは、ショウジョウバエの筋管の肥大をもたらす”。 J. セルバイオロジー 169 (6): 909-20. PMC 2171639. PMID 15955848.
  17. ^ Schulz HN, Brinkhoff T, Ferdelman TG, Mariné MH, Teske A, Jorgensen BB (April 1999). “Dense population of a giant sulfur bacterium in Namibian shelf sediments” (ナミビア棚堆積物における巨大硫黄細菌の密な集団)。 Science. 284 (5413): 493-5. Bibcode:1999Sci…284..493S. doi:10.1126/science.284.5413.493. PMID 10205058. S2CID 32571118.
  18. ^ Taheri-Araghi, S; Bradde, S; Sauls, J. T.; Hill, N. S.; Levin, P. A.; Paulsson, J; Vergassola, M; Jun, S (2015年2月). “Cell-size control and homeostasis in bacteria”. カレントバイオロジー。 25 (3): 385-391. doi:10.1016/j.cub.2014.12.009. PMC 4323405. PMID 25544609.
  19. ^ Campos, M; Surovtsev, I. V.; Kato, S; Paintdakhi, A; Beltran, B; Ebmeier, S. E.; Jacobs-Wagner, C (December 2014). “A constant size extension drives bacteria cell size homeostasis”. Cell. 159 (6): 1433-1446. doi:10.1016/j.cell.2014.11.022. PMC 4258233. PMID 25480302.
  20. ^ Schmoller, Kurt M.; Skotheim, Jan M. (December 2015). “The Biosynthetic Basis of Cell Size Control”(細胞サイズ制御の生合成基盤)。 Trends Cell Biol. 25 (12): 793-802. doi:10.1016/j.tcb.2015.10.006. PMC 6773270. PMID 26573465.
  21. ^ Travis, W.D.; Brambilla, B.; Burke, A.P; Marx, A.; Nicholson, A.G. (2015). 肺、胸膜、胸腺および心臓の腫瘍のWHO分類. リヨン: 国際がん研究機関. ISBN 978-92-832-2436-5.
  22. ^ El-Naggar, A.K.; Chan, J.C.K.; Grandis, J.R.; Takata, T.; Slootweg, P.J. (2017-01-23). 頭頸部腫瘍のWHO分類. リヨン: 国際がん研究機関. ISBN 978-92-832-2438-9. 2019-10-31にオリジナルからアーカイブされています。 2019-10-31を取得した。
  23. ^ Ramanathan, Subramanian P.; Krajnc, Matej; Gibson, Matthew C. (October 2019). “Cell-Size Pleomorphism Drives Aberrant Clone Dispersal in Proliferating Epithelia”(細胞サイズの多形性は増殖上皮における異常なクローン分散を駆動する). Developmental Cell. 51 (1): 49-61.e4. doi:10.1016/j.devcel.2019.08.005. PMC 6903429. PMID 31495693.

書籍

  • Morgan, David O. (2007). 細胞周期:制御の原理. ロンドン:サンダーランド、マサチューセッツ州。 ISBN 978-0-9539181-2-6.
  • 細胞集団成長の世代モデルと指数モデルの比較
  • Local Growth in an Array of Disks Wolfram Demonstrations Project.

Image result for cell growth

細胞成長(または間期)とは細胞の生殖による「細胞集団の成長」という考えを表す略称である。 細胞が次の分裂の準備をする段階であり、生化学的な活動や反応が起こっていますが、この段階では明らかな変化は見られません

コメントを残す

メールアドレスが公開されることはありません。