Resultados y discusiones

Las imágenes de microscopía óptica se presentan en la Fig. 2. El cuerpo es no segmentado, de forma ovalada alargada. Los parásitos adultos tienen cuatro pares de patas. La longitud y la anchura medias de los parásitos hembra eran de 1,13 mm × 0,63 mm. La microscopía electrónica de barrido reveló que el escudo dorsal es estrecho y se estrecha hacia la parte posterior, terminando en una punta roma (Fig. 3a). En el escudo dorsal hay 11 pares de setas pilosas. La longitud de las setas del escudo dorsal es igual a la de las setas de la zona circundante. La superficie ventral de los ácaros hembra tiene tres escudos, el escudo esternal, el escudo genital y el escudo anal (Fig. 3b). El gnatosoma tiene quelíceros y pedipalpos (Fig. 4a). El quelícero es largo y puntiagudo, lo que es claramente visible en la microscopía de luz, aclarada durante el procesamiento con lactofenol (Fig. 2). Cada trocánter del pedipalpo tiene una quilla anteroventral. El tritosternum es largo y aserrado (Fig. 4a). El escudo esternal tiene tres pares de setas pilosas (Fig. 4b), de las cuales el par anterior está más cerca del margen anterior del escudo. El escudo genital tiene un par de setas genitales (Fig. 4b). El escudo anal tiene tres setas. El ano está situado en la mitad anterior del escudo anal. La parte posterior del escudo anal tiene un gran número de espinas dispuestas en forma de V que se extienden justo antes de la seta anal terminal (Fig. 4c). Las características micromorfológicas anteriores, observadas mediante microscopía electrónica de barrido, coinciden con las descripciones de otras publicaciones de O.bacoti Hirst, 1931 (Watson 2008; Soulsby 1982; Engel et al. 1998). Algunas características morfológicas, como la pilosidad, la placa dorsal puntiaguda, la forma típica de la placa anal con un ano craneal, permiten diferenciar el ácaro de la rata tropical de otros parásitos estrechamente relacionados, como el ácaro rojo de las aves (Dermanyssus gallinae) y el ácaro nórdico de las aves (Ornithonyssus sylvarium) (Beck y Fölster-Holst 2009). Son escasos los informes sobre la microscopía de los estadios de desarrollo del parásito. Sin embargo, la revisión sobre el ciclo de vida de este parásito realizada por Engel et al. (1998) proporciona información para diferenciar todos los estadios de desarrollo, incluidos los huevos, la larva, la protoninfa, la deutoninfa y el adulto, basándose en sus caracteres morfológicos, como el tamaño y el número de patas. La microscopía electrónica de barrido crea una imagen tridimensional de la estructura superficial de un objeto. Debido a su mayor capacidad de resolución, de hasta 2 millones de veces, frente a las 1.000-2.000 veces de la microscopía óptica, la microscopía electrónica permite estudiar estructuras micromorfológicas no visibles con la microscopía óptica. Sin embargo, la microscopía electrónica es cara y requiere experiencia.

Varias especies de ácaros incluyendo Sarcoptes scabiei, Notoedres cati, Cheyletiella spp, D. gallinae, O. bacoti, Ophionyssus natricis y Neotrombicula autumnalis pueden infestar la piel humana y provocar síntomas (Beck y Pfister 2006). Los ácaros pueden producir prurito o reacción alérgica a través de las proteínas salivales depositadas durante la alimentación (Scharf y Daly 2003). La reacción de hipersensibilidad común a todas las mordeduras, picaduras y productos de artrópodos se denomina urticaria papular (Steen et al. 2004). Las especies de ácaros que aparecen en los animales pueden ser la causa de una infestación temporal en el ser humano. Una de estas infestaciones temporales en humanos se produce en el caso de O. bacoti, también conocido como ácaro de la rata tropical. O. bacoti es un parásito hematófago periódico que pasa relativamente poco tiempo en el huésped. Cuando la rata es atrapada, o ha abandonado su espacio vital, el ácaro puede provocar una infestación en busca de alimento. Se ha informado de la presencia del ácaro de la rata tropical en muchos países, excepto en la región ártica y antártica (Engel et al. 1998).

No es necesario el tratamiento habitual con agentes antiparasitarios en pacientes humanos, sin embargo, si está indicado, se puede proporcionar un tratamiento sintomático (Beck 2007). Diferentes autores han informado del uso de antihistamínicos (Hetherington et al. 1971), glucocorticoides (Fishman 1988), lindano (Fishman 1988) y benzoato de bencilo al 25% (Tika Ram et al. 1986). En nuestro caso, utilizamos el tratamiento antihistamínico solo en unos pocos pacientes, ya que la gravedad de las lesiones que encontramos era muy reducida. Algunos de los pacientes experimentaron un intenso picor, por lo que se prescribió un fármaco antihistamínico. El prurito disminuyó tras la administración de antihistamínicos y las lesiones tienden a desaparecer en un período más corto en los pacientes a los que se les administran fármacos antihistamínicos. La recuperación se produjo sin incidentes en un periodo de 5-10 días.

En las instalaciones de animales de laboratorio, un programa de erradicación completo debería incluir idealmente la eliminación del reservorio de roedores comensales, el tratamiento de los animales infestados y su entorno. Sin embargo, no se puede ignorar la reinfestación si el programa de desratización fracasa. La demolición y renovación de edificios o la eliminación de roedores comensales son periodos de especial riesgo y pueden dar lugar a nuevas infestaciones de ácaros de laboratorio, ya que los ácaros viajan en busca de nuevos huéspedes (Watson 2008). También se ha informado de que el ácaro puede sobrevivir de 2 semanas a varios meses sin alimentarse (Baker 1998). El programa de control en nuestras instalaciones incluyó la erradicación del reservorio de roedores comensales en la instalación de animales de laboratorio, el uso de deltametrina fácilmente disponible (Butox vet ®), un insecticida del grupo de los piretroides, para tratar la colonia infestada y su entorno (Nath et al. 2013). Otros fármacos del grupo de los piretroides, a saber, la permetrina, un piretroide sintético (Hill et al. 2005, Cole et al. 2005), ya sea solo o en combinación con la deltametrina de liberación sostenida (Watson 2008), se han utilizado con éxito para tratar la infestación en una colonia de ratones de laboratorio.

Este estudio llegó a la conclusión de que los casos de dermatitis en el personal que trabajaba en la instalación de animales de laboratorio se debieron a las picaduras de O. bacoti que se originaron en la colonia de ratones infestada. La microscopía electrónica de barrido fue útil para confirmar la identificación del parásito basándose en los estudios de las estructuras micromorfológicas. En la India hay poca información sobre la aparición de la infestación por O. bacoti y la dermatitis causada por este parásito. Aunque no hay casos registrados, es necesario considerar seriamente el potencial de este ácaro para transmitir la enfermedad. El tratamiento sintomático, cuando sea necesario, puede ser útil para reducir la gravedad del picor.