Resultados e discussões

As imagens do microscópio luminoso são apresentadas na Fig. 2. O corpo é oval, alongado e não segmentado. Os parasitas adultos têm quatro pares de pernas. O comprimento e largura médios dos parasitas femininos foram de 1,13 mm × 0,63 mm. A microscopia eletrônica de varredura revelou que o escudo dorsal é estreito e afilado em direção ao lado posterior terminando em um ponto rombo (Fig. 3a). Há 11 pares de sedas de pilose no escudo dorsal. O comprimento das sedas no escudo dorsal era igual ao das sedas da área ao redor. A superfície ventral dos ácaros fêmeas tem três escudos, escudo esternal, escudo genital e escudo anal (Fig. 3b). O gnathosoma tem quelícera e pedipalp (Fig. 4a). A quelícera é longa e pontiaguda, o que é muito claramente visível em microscopia de luz, limpa durante o processamento com lactofenol (Fig. 2). Cada trocânter do pedipalpo tem uma quilha anteroventral. O tritosternum é longo e serrilhado (Fig. 4a). O escudo esterno tem três pares de sedas de pilose (Fig. 4b) dos quais o par anterior está mais próximo da margem anterior do escudo. O escudo genital tem um par de sedas genitais (Fig. 4b). O escudo anal tem três sedas. O ânus está localizado na metade anterior do escudo anal. A parte posterior do escudo anal tem um grande número de espinhas dispostas em forma de V, estendendo-se um pouco antes das sedas anais terminais (Fig. 4c). As características micro-morfológicas acima observadas pela microscopia eletrônica de varredura são conforme as descrições de outra literatura publicada para O.bacoti Hirst, 1931 (Watson 2008; Soulsby 1982; Engel et al. 1998). Certas características morfológicas, como a pilosidade, placa dorsal caudalmente pontiaguda, forma típica de placa anal com ânus craniano, permitem diferenciar o ácaro do rato tropical de outros parasitas intimamente relacionados, como o ácaro vermelho (Dermanyssus gallinae) e o ácaro nórdico (Ornithonyssus sylvarium) (Beck e Fölster-Holst 2009). Há um relatório escasso sobre a microscopia das fases de desenvolvimento do parasita. Contudo, a revisão sobre o ciclo de vida deste parasita feita por Engel et al. (1998) fornece informações para diferenciar todos os estágios de desenvolvimento, incluindo ovos, larvas, protoninfa, deutoninfa e adultos, com base em seus caracteres morfológicos, como tamanho e número de patas. A microscopia eletrônica de varredura cria uma imagem tridimensional da estrutura da superfície de um objeto. Devido à sua maior capacidade de resolução até 2 milhões de vezes, em comparação com 1.000-2.000 vezes em microscopia óptica, a microscopia electrónica permite o estudo de estruturas micromorfológicas não visíveis por microscopia óptica. Contudo, a microscopia electrónica é dispendiosa e necessita de perícia.

Espécies de ácaros incluindo Sarcoptes scabiei, Notoedres cati, Cheyletiella spp, D. gallinae, O. bacoti, Ophionyssus natricis e Neotrombicula autumnalis podem infestar a pele humana, causando sintomas (Beck e Pfister 2006). Os ácaros podem produzir prurite ou reacção alérgica através das proteínas salivares depositadas durante a alimentação (Scharf e Daly 2003). A reacção de hipersensibilidade comum a todas as picadas, picadas e produtos de artrópodes é referida como urticária papular (Steen et al. 2004). As espécies de ácaros que ocorrem nos animais podem ser a causa de infestação humana temporária. Uma dessas infestações temporárias em humanos ocorre no caso do O. bacoti, também conhecido como ácaro do rato tropical. O. bacoti é um parasita hematófago periódico e passa relativamente pouco tempo com um hospedeiro. Quando o rato está preso, ou abandonou o seu espaço de vida, o ácaro pode causar uma infestação em busca de alimento. O ácaro do rato tropical tem sido relatado para ocorrer em muitos países, exceto na região ártica e antártica (Engel et al. 1998).

Casual terapia por agentes antiparasitários em pacientes humanos não é necessária, entretanto, se indicado, o tratamento sintomático pode ser fornecido (Beck 2007). Diferentes autores relataram o uso de anti-histamínico (Hetherington et al. 1971), glicocorticóides (Fishman 1988), lindane (Fishman 1988) e 25% benzoato de benzilo (Tika Ram et al. 1986). No nosso caso, usamos tratamento anti-histamínico sozinho, apenas em poucos pacientes, pois a gravidade das lesões que encontramos foi muito menor. Alguns dos pacientes sofreram comichão severa, por isso foi prescrito medicamento anti-histamínico. A coceira diminuiu após a administração de anti-histamínicos e as lesões tendem a desaparecer em períodos mais curtos nos pacientes aos quais foram administrados anti-histamínicos. A recuperação foi sem problemas num período de 5-10 dias.

Em instalações de animais de laboratório um programa de erradicação abrangente deve idealmente incluir a eliminação do reservatório de roedores comensal, tratando os animais infestados e o seu ambiente. No entanto, a reinfestação não pode ser ignorada se o programa de controle de ratos falhar. A demolição de edifícios e renovações ou remoção de roedores comensais são períodos de alto risco e podem resultar em novas infestações por ácaros roedores de laboratório à medida que os ácaros viajam em busca de novos hospedeiros (Watson 2008). Também foi relatado que o ácaro pode sobreviver de 2 semanas a vários meses sem se alimentar (Baker 1998). O programa de controle em nossas instalações incluiu a erradicação do reservatório de roedores commensel nas instalações do Laboratório Animal, o uso de deltametrina (Butox vet ®), um grupo piretróide se inseticida, para tratar a colônia infestada e seu ambiente (Nath et al. 2013). Outros grupos de fármacos piretróides, como permetrina, um piretróide sintético (Hill et al. 2005, Cole et al. 2005), isoladamente ou em combinação com deltametrina de libertação prolongada (Watson 2008) foram utilizados com sucesso no tratamento da infestação numa colónia de ratos de laboratório.

Este estudo concluiu que os casos de dermatite no pessoal que trabalha nas instalações do Laboratório de Animais de Laboratório se deveram às picadas de O. bacoti que se originaram da colónia de ratos infestada. A microscopia eletrônica de varredura foi útil para confirmar a identificação do parasita com base nos estudos de estruturas micromorfológicas. Na Índia, existe informação limitada sobre a ocorrência de infestação por O. bacoti e dermatite causada por O. bacoti. Embora não existam casos registados, o potencial deste ácaro na transmissão da doença precisa de ser visto seriamente. O tratamento sintomático, como e quando necessário, pode ser útil para reduzir a gravidade da coceira.