Ergebnisse und Diskussionen

Die lichtmikroskopischen Bilder sind in Abb. 2 dargestellt. Der Körper ist unsegmentiert und von länglich-ovaler Form. Erwachsene Parasiten haben vier Beinpaare. Die mittlere Länge und Breite der weiblichen Parasiten betrug 1,13 mm × 0,63 mm. Die Rasterelektronenmikroskopie ergab, dass der Dorsalschild schmal ist und sich zur Hinterseite hin verjüngt und in einer stumpfen Spitze endet (Abb. 3a). Auf dem Dorsalschild befinden sich 11 Paare von pilosierten Seten. Die Länge der Seten auf dem Dorsalschild entsprach der Länge der Seten in der Umgebung. Die ventrale Oberfläche der weiblichen Milben weist drei Schilde auf: Sternumschild, Genitalschild und Analschild (Abb. 3b). Das Gnathosoma besteht aus Chelizeren und Pedipalpen (Abb. 4a). Die Cheliceren sind lang und spitz, was in der Lichtmikroskopie, die bei der Bearbeitung mit Lactophenol gereinigt wurde, sehr deutlich zu erkennen ist (Abb. 2). Jeder Trochanter der Pedipalpen hat einen anteroventralen Kiel. Das Tritosternum ist lang und gezähnt (Abb. 4a). Der Sternumschild hat drei Paare von pilösen Seten (Abb. 4b), von denen das vordere Paar näher am vorderen Rand des Schildes liegt. Der Genitalschild hat ein Paar Genitalhaare (Abb. 4b). Der Analschild hat drei Seten. Der Anus befindet sich in der vorderen Hälfte des Analschildes. Der hintere Teil des Analschildes weist eine große Anzahl von V-förmig angeordneten Stacheln auf, die sich bis kurz vor die endständigen Analstacheln erstrecken (Abb. 4c). Die oben genannten mikromorphologischen Merkmale, die mittels Rasterelektronenmikroskopie beobachtet wurden, entsprechen den Beschreibungen anderer veröffentlichter Literatur für O. bacoti Hirst, 1931 (Watson 2008; Soulsby 1982; Engel et al. 1998). Bestimmte morphologische Merkmale wie Behaarung, kaudal zugespitzte Dorsalplatte, typische Form der Analplatte mit kranialem Anus ermöglichen die Unterscheidung der tropischen Rattenmilbe von anderen eng verwandten Parasiten wie der Roten Vogelmilbe (Dermanyssus gallinae) und der Nordischen Vogelmilbe (Ornithonyssus sylvarium) (Beck und Fölster-Holst 2009). Es gibt nur wenige Berichte über die Mikroskopie der Entwicklungsstadien des Parasiten. Die Übersichtsarbeit über den Lebenszyklus dieses Parasiten von Engel et al. (1998) liefert jedoch Informationen zur Unterscheidung aller Entwicklungsstadien, einschließlich der Eier, der Larve, der Protonymphe, der Deuteronymphe und des adulten Tieres auf der Grundlage ihrer morphologischen Merkmale, d. h. Größe und Anzahl der Beine. Die Rasterelektronenmikroskopie erzeugt ein dreidimensionales Bild der Oberflächenstruktur eines Objekts. Aufgrund ihres höheren Auflösungsvermögens von bis zu 2 Millionen Mal im Vergleich zu 1.000-2.000 Mal bei der Lichtmikroskopie ermöglicht die Elektronenmikroskopie die Untersuchung von mikromorphologischen Strukturen, die bei der Lichtmikroskopie nicht sichtbar sind. Allerdings ist die Elektronenmikroskopie teuer und erfordert Fachwissen.

Verschiedene Milbenarten wie Sarcoptes scabiei, Notoedres cati, Cheyletiella spp, D. gallinae, O. bacoti, Ophionyssus natricis und Neotrombicula autumnalis können die menschliche Haut befallen und Symptome verursachen (Beck und Pfister 2006). Milben können Juckreiz oder allergische Reaktionen durch Speichelproteine hervorrufen, die beim Fressen abgegeben werden (Scharf und Daly 2003). Die häufige Überempfindlichkeitsreaktion auf alle Bisse, Stiche und Produkte von Arthropoden wird als papulöse Urtikaria bezeichnet (Steen et al. 2004). Milbenarten, die bei Tieren vorkommen, können die Ursache für einen vorübergehenden Befall beim Menschen sein. Ein solcher vorübergehender Befall beim Menschen tritt im Falle von O. bacoti auf, auch bekannt als Tropische Rattenmilbe. O. bacoti ist ein periodisch auftretender hämatophage Parasit und verbringt nur relativ kurze Zeit auf einem Wirt. Wird die Ratte gefangen oder hat sie ihren Lebensraum verlassen, kann die Milbe auf der Suche nach Nahrung einen Befall verursachen. Über das Vorkommen der tropischen Rattenmilbe wurde in vielen Ländern mit Ausnahme der arktischen und antarktischen Region berichtet (Engel et al. 1998).

Eine Therapie mit antiparasitären Mitteln ist beim Menschen nicht notwendig, kann aber bei Bedarf symptomatisch erfolgen (Beck 2007). Verschiedene Autoren haben über die Verwendung von Antihistaminika (Hetherington et al. 1971), Glukokortikoiden (Fishman 1988), Lindan (Fishman 1988) und 25 % Benzylbenzoat (Tika Ram et al. 1986) berichtet. In unserem Fall haben wir nur bei wenigen Patienten Antihistaminika eingesetzt, da der Schweregrad der Läsionen, die wir vorfanden, sehr gering war. Einige der Patienten litten unter starkem Juckreiz, so dass Antihistaminika verschrieben wurden. Der Juckreiz ließ nach der Verabreichung von Antihistaminika nach, und die Läsionen verschwinden bei Patienten, die Antihistaminika erhalten, in der Regel in kürzerer Zeit. Die Genesung verlief innerhalb von 5-10 Tagen reibungslos.

In Labortiereinrichtungen sollte ein umfassendes Tilgungsprogramm idealerweise die Beseitigung des Nagetierreservoirs, die Behandlung der befallenen Tiere und ihrer Umgebung umfassen. Wenn das Rattenbekämpfungsprogramm fehlschlägt, kann ein erneuter Befall jedoch nicht ignoriert werden. Der Abriss und die Renovierung von Gebäuden oder die Beseitigung kommender Nagetiere sind besonders risikoreiche Zeiträume und können zu einem neuen Befall mit Labornagermilben führen, da die Milben auf der Suche nach neuen Wirten wandern (Watson 2008). Es wurde auch berichtet, dass die Milbe 2 Wochen bis mehrere Monate ohne Nahrungsaufnahme überleben kann (Baker 1998). Das Bekämpfungsprogramm in unserer Einrichtung umfasste die Ausrottung des Nagetierreservoirs in der Labortieranlage, die Verwendung von leicht verfügbarem Deltamethrin (Butox vet ®), einem Insektizid der Pyrethroidgruppe, zur Behandlung der befallenen Kolonie und ihrer Umgebung (Nath et al. 2013). Andere Medikamente aus der Gruppe der Pyrethroide, nämlich Permethrin, ein synthetisches Pyrethroid (Hill et al. 2005, Cole et al. 2005), wurden entweder allein oder in Kombination mit Deltamethrin mit verzögerter Freisetzung (Watson 2008) erfolgreich zur Behandlung des Befalls in einer Labormauskolonie eingesetzt.

Diese Studie kam zu dem Schluss, dass die Fälle von Dermatitis beim Personal, das in der Labortieranlage arbeitet, auf die Bisse von O. bacoti zurückzuführen sind, die aus einer befallenen Mäusekolonie stammen. Die Rasterelektronenmikroskopie war nützlich, um die Identifizierung des Parasiten anhand der Untersuchung mikromorphologischer Strukturen zu bestätigen. In Indien gibt es nur wenige Informationen über den Befall mit O. bacoti und die von O. bacoti verursachte Dermatitis. Obwohl keine Fälle bekannt sind, muss das Potenzial dieser Milbe zur Übertragung von Krankheiten ernst genommen werden. Eine symptomatische Behandlung kann bei Bedarf hilfreich sein, um die Schwere des Juckreizes zu verringern.