A model of human phenylalanine metabolism in normal subjects and in phenylketonuric patients

, Author

Abstract

The derivation of a quantitative model of phenylalanine metabolism in humans is described. Model ten opiera się na właściwościach kinetycznych czystej rekombinowanej ludzkiej hydroksylazy fenyloalaniny oraz na szacunkach szybkości transaminacji fenyloalaniny i degradacji białka in vivo. Obliczone wartości dla stężenia fenyloalaniny we krwi w stanie stacjonarnym, szybkości klirensu fenyloalaniny z krwi po doustnym obciążeniu aminokwasem i tolerancji diety fenyloalaniny dobrze zgadzają się z danymi z normalnych, jak również z pacjentów z fenyloketonurią i obowiązkowych heterozygot. Te obliczone wartości mogą pomóc w podjęciu decyzji o stopniu ograniczenia spożycia fenyloalaniny, który jest niezbędny do osiągnięcia zadowalającego wyniku klinicznego u klasycznych pacjentów oraz u osób z łagodniejszymi postaciami choroby.

Wstępnym i ograniczającym tempo etapem całkowitego katabolizmu fenyloalaniny do CO2 i wody jest jej hydroksylacja do tyrozyny, reakcja katalizowana przez układ hydroksylacji fenyloalaniny. Układ ten jest złożony, składa się z hydroksylazy fenyloalaninowej (PAH), koenzymu pteryny – tetrahydrobiopteryny (BH4) oraz kilku enzymów służących do regeneracji BH4, tj, reduktaza dihydropterydyny i dehydrataza pteryny 4α-karbinolaminy (1, 2).

Ale chociaż pierścień benzenowy fenyloalaniny nie może zostać rozerwany bez uprzedniego hydroksylowania w pozycji para, łańcuch boczny alaniny tego aminokwasu może być metabolizowany nawet przy braku etapu hydroksylacji pierścienia. Ta alternatywna ścieżka jest inicjowana przez transaminację fenyloalaniny do fenylopirogronianu, po której następuje konwersja tego ostatniego związku do metabolitów, takich jak fenylooctan, fenylooctan i o-hydroksyfenylooctan. Produkty szlaku transaminazowego są wydalane z moczem. Etapy tych alternatywnych szlaków metabolizmu fenyloalaniny są przedstawione na ryc. 1.

1 Aby przekształcić to ogólne równanie w taki, który byłby przydatny w analizie wyników testów obciążeniowych fenyloalaniny, każdy z tych terminów prędkości muszą być zastąpione równaniami szybkości, które opisują trzy procesy metaboliczne zaangażowanych. Gdy wymagane dane były niedostępne, należało przyjąć założenia omówione poniżej.

Na początku należy zauważyć, że poprzednia próba przeprowadzenia takiej analizy była utrudniona z powodu braku danych na temat właściwości kinetycznych ludzkiego PAH i ludzkiej transaminazy fenyloalaninowej. W istocie, w przypadku tego ostatniego enzymu, nawet tożsamość enzymu odpowiedzialnego za tę aktywność in vivo nie była znana z całą pewnością. Ponieważ dowody in vitro wskazywały, że fenyloalanina jest doskonałym substratem dla mitochondrialnej aminotransferazy asparaginianowej, założono, że jest to zaangażowana transaminazy. Ponadto, ponieważ właściwości ludzkiego odpowiednika nie były znane, wykorzystano właściwości kinetyczne odpowiadającego mu enzymu szczurzego (12). Sposób, w jaki problem ludzkiej transaminazy został potraktowany w obecnej analizie, zostanie omówiony poniżej.

Właściwości kinetyczne rekombinowanej ludzkiej PAH są obecnie dostępne (16, 17). Kinetyka PAH jest nieco skomplikowana przez fakt, że fenyloalanina służy nie tylko jako substrat dla enzymu, ale także jako aktywator (patrz ref. 1 i odnośniki tamże). Ponieważ poprzednia analiza kinetycznego zachowania PAH oparta na modelu dwumiejscowym z uporządkowanym wiązaniem fenyloalaniny zarówno w miejscu katalitycznym, jak i regulacyjnym, mogła odpowiednio wyjaśnić wiele osobliwych aspektów kinetycznego zachowania enzymu (18), podobny dwumiejscowy, uporządkowany model wiązania został zastosowany w obecnej analizie. Użyte rzeczywiste równanie szybkości (19) jest pokazane w Eq. 2, gdzie Km jest stężeniem fenyloalaniny, które daje pół-maksymalną prędkość i Ka jest stężeniem fenyloalaniny, które daje pół-maksymalną aktywację w eksperymencie, w którym PAH był preinkubowany z różnymi stężeniami fenyloalaniny. Do niniejszej analizy wykorzystano następujące stałe kinetyczne, wyznaczone dla czystego rekombinowanego ludzkiego PAH w temperaturze 37°C z BH4 jako koenzymem: Km dla fenyloalaniny, 0,51 mM, oraz Ka dla fenyloalaniny jako aktywatora, 0,54 mM (D. Kowlessur i S.K., dane niepublikowane). Przybliżona wartość Vmax dla ludzkiego PAH (16) (prawdopodobnie niedoszacowana) została obliczona na podstawie początkowego tempa spadku poziomu fenyloalaniny w surowicy (0,9 μmol/ml na h) u osób z grupy kontrolnej po otrzymaniu doustnego obciążenia l-fenyloalaniną, które było wystarczające do zwiększenia poziomu fenyloalaniny w surowicy o ≈17-krotność (20). Math2 Jak wskazano powyżej, poprzedni problem tożsamości enzymu u człowieka, który jest odpowiedzialny za transaminację fenyloalaniny został pominięty w obecnej analizie. Założono, że główną drogą utylizacji netto fenyloalaniny u klasycznych pacjentów PKU jest transaminacja. Na przykład, jak już wspomniano, wydalanie fenyloalaniny z moczem wynosi tylko ≈11% ilości, która jest transaminowana, a do końca pierwszego roku życia można oszacować, że ilość fenyloalaniny usuniętej poprzez włączenie do białka wynosi tylko ≈25% ilości usuniętej poprzez transaminację. Należy zauważyć, że przy obecnej metodzie szacowania szybkości transaminazy fenyloalaninowej, która opiera się na szybkości klirensu fenyloalaniny z krwi, pomniejsze reakcje utylizacji fenyloalaniny, takie jak jej wydalanie z moczem i wbudowywanie do białka, są uwzględniane w szacowaniu aktywności transaminazy, co skutkuje niewielkim przeszacowaniem tej aktywności.

Aby być użytecznym w obecnej analizie, potrzebne są wartości Km i Vmax transaminazy. Podjęto próby wyodrębnienia wartości Km dla transaminacji fenyloalaniny na podstawie wyników testów obciążenia fenyloalaniną przeprowadzonych na klasycznych pacjentach PKU (21). Podejście przyjęte do oszacowania wartości Vmax dla ludzkiego enzymu transaminującego polegało na wykorzystaniu danych dotyczących sumy wszystkich metabolitów pochodzących z transaminacji (tj. fenylopirogronianu, fenylomleczanu i o-hydroksyfenylooctanu) wydalanych przez grupę pacjentów z klasycznym PKU jako funkcji ich poziomów fenyloalaniny w osoczu. Maksymalna ilość wydalana, wyrażona w mmol/mol kreatyniny, wynosiła 1,370, poziom, który wydawał się być plateau przy poziomach fenyloalaniny w osoczu pomiędzy 1,200 a 2,400 μmol/liter (22).

Próby przeliczenia tej wartości na szybkość transaminacji są skomplikowane przez szeroki zakres wieku, od ≈2 lat do ≈18 lat, w próbie pacjentów użytych w badaniu. Dla potrzeb niniejszej analizy przyjęto, że średnia masa ciała pacjentów wynosiła 50 kg, a dobowe wydalanie kreatyniny wynosiło 2 g/24 h (23). Przyjęto również założenie, że wydalanie metabolitów pochodzących z transaminaz odbywa się w liniowym tempie w ciągu 24 h i odzwierciedla szybkość powstawania tych metabolitów. Założono również, że związki te wyrównują się ze wszystkimi przedziałami płynu ustrojowego z wyjątkiem gęstej tkanki łącznej chrząstki i kości, które łącznie stanowią 15% całkowitej wody ustrojowej (24), co daje objętość dystrybucji dostępnej wody 500 ml/kg masy ciała. Na podstawie tych założeń maksymalną szybkość transaminacji obliczono na 0,043 μmol/ml na h.

Dodatkowym produktem metabolizmu fenyloalaniny, pochodzącym, przynajmniej częściowo, z fenylopirogronianu, który nie był mierzony w badaniu Langenbecka i wsp. (22), jest fenyloacetyloglutamina (PAG). Istnieją dowody, że PAG może powstawać z fenylooctanu, który pochodzi z fenylopirogronianu w wyniku oksydacyjnej dekarboksylacji (25). Zaproponowano również, że fenylooctan, a zatem PAG, może być utworzony z fenyloalaniny na drodze, która nie obejmuje transaminacji, ale zamiast tego obejmuje dekarboksylację do fenyloetyloaminy, po której następuje utlenienie aminy do fenylooctanu (26). Stwierdzenie, że ilość fenyloetyloaminy wydalanej u pacjentów z PKU jest niewielka nawet po zablokowaniu utleniania aminy przez podanie inhibitora oksydazy aminowej (27), wskazuje jednak, że, jak omówiono wcześniej (12), dekarboksylacja fenyloalaniny jest ilościowo mniejszą ścieżką metabolizmu fenyloalaniny, jak również tworzenia PAG.

Ilość PAG wydalana przez normalne osoby wynosi 250-500 mg/dobę; pacjenci z PKU wydalają dwa razy tyle (28). W celu obliczenia ilości PAG powstającego na drodze transaminazowej przyjęto konserwatywne założenie, że tylko „dodatkowa” ilość wydalana przez pacjentów pochodzi z fenylopirogronianu. Przyjmując średnią dodatkową ilość wydalanego PAG jako 350 mg/dzień i przyjmując te same założenia przedstawione powyżej, wydalanie to przekłada się na szybkość tworzenia PAG wynoszącą 0,020 μmol/ml na h, co sprowadza szybkość tworzenia wszystkich transaminowanych produktów do 0,063 μmol/ml na h.

Przy zastosowaniu tej wartości dla Vmax, wyniki testu obciążenia fenyloalaniną przeprowadzonego na klasycznych pacjentach PKU (21) zostały wykorzystane do obliczenia wartości 1.37 ± 0,14 mM (średnia ± SD, n = 3) dla Km transaminazy fenyloalaniny.

Ponieważ w obecnej analizie aktywności PAH i transaminazy są obliczane jako funkcja poziomów fenyloalaniny we krwi, ważne jest, aby poziomy te odzwierciedlały poziomy tkankowe tego aminokwasu. Odnosząc się do tego punktu, poziomy fenyloalaniny w tkance wątroby od pacjenta PKU (29), jak również w tkance wątroby i nerek od szczurów z hiperfenyloalanemią (30), zostały zgłoszone, aby być porównywalne do odpowiednich poziomów we krwi.

Trzeci człon w równaniu 2, szybkość degradacji netto białka, został oszacowany na podstawie danych Waterlowa i Jacksona (31), wykazujących, że w stanie na czczo, czyli w stanie, w którym przeprowadza się test obciążenia fenyloalaniną, rozkład netto białka (tj, ilość białka rozłożonego minus ilość syntetyzowanego) wynosi 0,30 g/kg masy ciała na 12 godzin. Ponieważ mięśnie szkieletowe stanowią ≈40% masy ciała (24), a katabolizm białek w tej tkance odgrywa główną rolę w dostarczaniu aminokwasów na obwód, degradacja białek w mięśniach szkieletowych została przyjęta jako dominujące wydarzenie w degradacji białek, która zachodzi podczas postu.

Mięśnie szkieletowe człowieka zawierają ≈46 μmol fenyloalaniny/g tkanki (32). Na podstawie tej wartości i ustalenia, że mięśnie dorosłego człowieka zawierają 19,8% białka (33), można oszacować, że mięsień zawiera 232 μmol fenyloalaniny/g białka mięśniowego. Jeżeli wartość ta zostanie przyjęta jako reprezentatywna dla zapasów białka w organizmie, wskazywałoby to, że ≈70 μmol fenyloalaniny/kg masy ciała na 12 h zostanie uwolnione podczas okresu postu. Na podstawie tych samych założeń, które poczyniono powyżej przy szacowaniu tempa transaminacji fenyloalaniny, ostatnia wartość przekładałaby się na godzinne tempo degradacji białka netto (i uwalniania fenyloalaniny z tego procesu) 0,012 μmol/ml na h. Ponieważ substrat dla tej reakcji, a mianowicie zapasy białka w organizmie, prawdopodobnie pozostałby względnie stały podczas krótkiego okresu postu, przyjęto, że degradacja białka następuje zgodnie z kinetyką zerowego rzędu.

Substytucja wartości oszacowanych dla stałych kinetycznych dla trzech reakcji przedstawionych w równaniu 1 daje równanie 3: Math Math3

WYNIKI I DYSKUSJA

Ogólną ważność równania 3 można ocenić na kilka sposobów. Po pierwsze, stosując wyrażenie na szybkość reakcji katalizowanej przez WWA, z uwzględnieniem stałych kinetycznych podanych w równaniu, obliczono, że podstawowa szybkość reakcji hydroksylacji wynosi 0,010 μmol/ml na h. Wartość ta dobrze zgadza się z następującymi wartościami. Wartość ta dobrze zgadza się z następującymi wartościami podanymi dla osób zdrowych na podstawie doświadczeń, w których osobom tym podawano l-fenyloalaninę: 0,013 μmol/ml na h; 0,008 μmol/ml na h (34); 0,012 μmol/ml na h (5); 0,010 μmol/ml na h (6). Wartość 0,020 μmol/ml na h stwierdzono w ostatnim badaniu, gdy badanym podawano infuzję l-fenyloalaniny (6). Przytoczone wskaźniki in vivo dla konwersji fenyloalaniny do tyrozyny wszystkie zostały zgłoszone jako μmol/h na kg. Zostały one przeliczone na μmol/ml na godzinę na podstawie tych samych założeń, które zastosowano poprzednio, tj. że dystrybucja objętościowa metabolitów takich jak fenyloalanina wynosi 500 ml/kg masy ciała. Wyniki te pokazują, że obliczona szybkość hydroksylacji fenyloalaniny zgadza się dobrze z doświadczalnie wyznaczonymi szybkościami.

Innym testem ważności modelu jest obliczenie poziomu fenyloalaniny we krwi w stanie ustalonym zarówno dla osób z grupy kontrolnej, jak i dla heterozygot PKU, u których zakłada się, że mają 50% normalnej aktywności PAH, a także t1/2 dla klirensu ładunku fenyloalaniny (tj, czas wymagany do tego, aby początkowe stężenie fenyloalaniny zmniejszyło się do połowy swojej pierwotnej wartości) z krwi dla tych dwóch grup. Poziom fenyloalaniny w stanie stacjonarnym dla osób z grupy kontrolnej, obliczony na podstawie równania 3 (poprzez ustawienie terminu „-dPhe/dt” równego zero i obliczenie stężenia fenyloalaniny), wynosi 0,059 mM, a dla osób z 50% resztkową aktywnością PAH wynosi 0,079 mM, czyli jest 1,34-krotnie wyższy od poziomu kontrolnego. Chociaż wartość 0,059 mM dla normalnych osób zgadza się dobrze z przyjętą wartością 0,058 ± 0,015 mM (średnia i SD) (35), wartość 0,079 mM dla heterozygot, u których można się spodziewać 50% normalnego poziomu PAH, wydaje się być zbyt niska. Stosunek poziomów fenyloalaniny we krwi dla kontroli i dla obowiązkowych heterozygot PKU został zgłoszony w zakresie 1,57-1,61 (36-38), a nie stosunek 1,34, który został przewidziany przez model.

Ta obliczona wartość podnosi możliwość, że heterozygoty PKU mogą mieć mniej niż 50% kontrolnej aktywności PAH. Podstawienie wartości 40% kontrolnej aktywności PAH dla heterozygot do Eq. 3 daje stężenie fenyloalaniny w stanie stacjonarnym 0,093 mM; używając tej wartości i wartości 0,058 mM dla kontroli, uzyskuje się stosunek 1,60, który jest bliski zakresowi zgłoszonemu dla heterozygot i kontroli (patrz wyżej). W związku z tym należy zauważyć, że aktywność resztkowa PAH w próbkach biopsji wątroby stwierdzona u sześciu heterozygot HPA obligate wahała się od 5,8 do 31% wartości kontrolnych (39). Wyniki te stanowiły pierwsze wskazanie, że heterozygoty HPA mają znacznie mniej niż 50% aktywności kontrolnej. Dwa późniejsze większe badania rodziców pacjentów z PKU były zgodne z tymi wcześniejszymi wynikami: w jednym badaniu odnotowano średnią wartość 29,3% kontroli (n = 9) (40), a w innym średnią wartość 28,1% (n = 8) (41).

Model przewiduje również wartości t1/2 dla klirensu fenyloalaniny z krwi zarówno dla normalnych, jak i heterozygot, które są zgodne z rzeczywistymi wynikami klinicznymi. Dla normalnych ludzi uzyskano wartość 65 min, która jest niższa od średniej wartości 89 min, ale mieści się w zakresie 60-120 min (10). Dla heterozygot z 50 i 40% resztkową aktywnością PAH, wartości t1/2 obliczone z Eq. 3 wynoszą odpowiednio 144 i 180 min, w porównaniu z podawaną średnią wartością 159 min .

Odniesiono się wcześniej do raportu dwóch pacjentów HPA, których niezdolność do metabolizowania fenyloalaniny wydawała się być wynikiem niedoboru transaminazy (11) i dowodów przeciwko temu wnioskowi (12). Obecny model dostarcza dodatkowych powodów, aby spojrzeć na to twierdzenie sceptycznie. Rys. 2 pokazuje przebieg czasowy zaniku 1 mM fenyloalaniny z osocza osoby kontrolnej (krzywa A), jak również osoby pozbawionej transaminazy, ale z normalnym poziomem PAH (krzywa B). Jak widać, oba wskaźniki są prawie takie same, co czyni niezwykle mało prawdopodobnym, że wyraźne HPA może być spowodowane przez brak transaminazy. Powodem bliskiej identyczności tych dwóch szybkości jest to, że szybkość znikania fenyloalaniny w całkowitej nieobecności PAH (krzywa D) jest bardzo mała, początkowa szybkość wynosi tylko 2,6% tej w kontroli z normalnym poziomem PAH. Rys. 2 (krzywa C) pokazuje również szybkość usuwania fenyloalaniny u osobnika z 40% normalnego poziomu PAH, deficyt aktywności PAH, który, jak omówiono powyżej, może reprezentować średnią dla heterozygot PKU.

Rycina 2

Obliczone wskaźniki klirensu ładunku fenyloalaniny dla kontroli i dla osób z różnymi genotypami. A, kontrola; B, osoba z zerową aktywnością transaminaz; C, osoba z 40% kontrolnej aktywności PAH; D, osoba z 0% kontrolnej aktywności PAH.

Ostatnio pacjenci z PKU byli klasyfikowani poprzez przypisanie ich do kategorii fenotypu na podstawie ich tolerancji fenyloalaniny w diecie. Pacjenci z klasycznym PKU tolerują mniej niż 20 mg/kg fenyloalaniny dziennie, aby utrzymać poziom fenyloalaniny we krwi na akceptowanym poziomie 0,3 mM, ci z „umiarkowanym PKU” tolerują 20-25 mg/kg dziennie, a ci z „łagodnym PKU” tolerują 25-50 mg/kg dziennie (42).

Aby sprawdzić, czy te wartości tolerancji fenyloalaniny w diecie są spójne z przewidywaniami dokonanymi przez Eq. 3, założono, że spożycie dozwolonej ilości fenyloalaniny zostało podzielone równo na trzy „posiłki”. Dla klasycznych pacjentów z PKU, u których spożycie fenyloalaniny wynosi 15 mg/kg dziennie, każdy posiłek zawierałby 5 mg/kg dziennie i dodawałby 0,06 μmol/ml do wartości wyjściowej 0,30 μmol/ml dla całkowitego poziomu fenyloalaniny w osoczu 0,30 + 0,06 = 0,36 μmol/ml. Podstawiając tę wartość do Równania 3 (zakładając, że Vmax dla klasycznego pacjenta PKU jest równe zeru), -dPhe/dt jest równe 0.001 μmol/ml na godzinę, tj. przy tym poziomie fenyloalaniny, prędkość znikania fenyloalaniny poprzez reakcję transaminacji ledwo przekracza prędkość wejścia fenyloalaniny do puli osoczowej poprzez degradację białek netto. Dlatego też, Eq. 3 przewiduje, że ci pacjenci PKU mogliby tolerować spożycie fenyloalaniny na poziomie 15 mg/kg dziennie.

Obliczone w ten sam sposób, „umiarkowane PKU” pacjentów z tolerancją diety fenyloalaniny 25 mg/kg dziennie wymagałoby resztkowej aktywności PAH równej 15% aktywności dzikiego typu, aby zmetabolizować ją w 3.5 h. Podobnie, pacjenci z „łagodnym PKU” z tolerancją fenyloalaniny w diecie wynoszącą 50 mg/kg dziennie wymagaliby resztkowego poziomu PAH równego 25% poziomu typu dzikiego, aby zmetabolizować dodaną fenyloalaninę w czasie około 3.5 h. Wyniki te wskazują, że Eq. 3 może stanowić o tolerancji diety fenyloalaniny widzianej w tych różnych grupach pacjentów.

Byłoby użyteczne, aby spróbować skorelować te szacunki resztkowej aktywności PAH dla „łagodnego PKU” i „umiarkowanego PKU” pacjentów z resztkową aktywnością hydroksylazy mierzoną in vitro dla zmutowanych gatunków PAH przechowywanych przez pacjentów. W chwili obecnej, jednakże, taka próba jest utrudniona z powodu zbyt dużego rozrzutu danych in vitro. Tak więc, kilku pacjentów sklasyfikowanych jako posiadających „umiarkowane PKU” (42) okazało się być nosicielami następujących trzech zmutowanych form PAH (z ich pozostałą aktywnością PAH in vitro wyrażoną jako procent aktywności typu dzikiego, pokazaną w nawiasie): L348V (25%), R261Q (30%, 47%), i R158Q (10%) (43). Można zauważyć, że wartości te różnią się prawie 5-krotnie. Jak omówiono wcześniej (2, 43), ogólnie rzecz biorąc, szacunki in vitro dotyczące aktywności resztkowej hydoksylazy mutantów PAH są zwykle wyższe niż te obserwowane w biopsjach wątroby. Przynajmniej jednym z powodów tej tendencji jest to, że aktywność PAH in vitro jest zwyczajowo mierzona przy użyciu nasycających stężeń fenyloalaniny i BH4, jak to miało miejsce w przypadku mutanta R261Q (44). Biorąc pod uwagę tę sytuację, możliwe jest, że resztkowe aktywności PAH oszacowane przy użyciu Eq. 3 może okazać się lepszym odzwierciedleniem w in vivo działalności niż te mierzone in vitro.

Ten model metabolizmu fenyloalaniny jest istotne dla wniosku osiągniętego przez Thompson i jego współpracowników (45, 46), na podstawie wyników uzyskanych przez infuzji przedmiotów z deuteru znakowanych fenyloalaniny i tyrozyny, że klasyczne PKU pacjenci mają „znaczne” PAH aktywności, która jest równa około 76%, że z przedmiotów kontrolnych. Ta zadziwiająco wysoka aktywność hydroksylacji fenyloalaniny została przypisana hydroksylazie tyrozyny (45). Jak już omówiono, wyniki podsumowane na ryc. 2 pokazują, że przy braku PAH, dawka fenyloalaniny jest usuwana z krwi w tempie mniejszym niż 3% tempa obserwowanego u osób kontrolnych. Nie ma żadnych wskazań z obecnej analizy, że jakakolwiek alternatywna ścieżka istnieje u ludzi, która może pozbyć się dużych ilości fenyloalaniny. Ostatnio van Spronsen et al. (34) zwrócili uwagę na potencjalny problem metodologiczny z metodą zastosowaną przez Thompsona i coworkers.

Podsumowując, ilościowe wyniki uzyskane za pomocą modelu metabolizmu PAH są spójne z danymi, które pośrednio odzwierciedlają aktywność in vivo PAH, takimi jak poziomy fenyloalaniny we krwi w stanie stacjonarnym, szybkości klirensu (konwencjonalnie wyrażone jako wartości t1/2) fenyloalaniny z krwi po obciążeniu fenyloalaniną i tolerancji diety dla fenyloalaniny. Model ma potencjał do ilościowego oszacowania aktywności resztkowej WWA na podstawie każdej z tych wartości, w szczególności na podstawie zmierzonych szybkości oczyszczania ładunku fenyloalaniny. Przewidywane poziomy resztkowych PAH lub wartości uzyskane na ich podstawie mogą być pomocne w podejmowaniu decyzji o tym, jak rygorystyczne musi być dietetyczne ograniczenie fenyloalaniny, aby osiągnąć pożądany poziom fenyloalaniny we krwi. Tabela 1 podsumowuje wartości t1/2 i poziomy fenyloalaniny we krwi w stanie stacjonarnym obliczone na podstawie równania 3 (zakładając brak spożycia fenyloalaniny w okresie badania) dla różnych poziomów aktywności resztkowej PAH, a także porównywalne wartości z odpowiednich danych klinicznych.

Wyświetl tę tabelę:

  • View inline
  • View popup
Tabela 1

Poziomy fenyloalaniny we krwi w stanie stacjonarnym i wartości tEmbedded Image dla klirensu fenyloalniny obliczone na podstawie Eq. 3 dla różnych poziomów PAH

Footnotes

  • ↵* Do kogo należy kierować prośby o przedruk. e-mail: kaufman{at}codon.nih.gov.

ABBREVIATIONS

PAH, hydroksylaza fenyloalaniny; PKU, fenyloketonuria; HPA, hiperfenyloalaninemia; PAG, fenyloacetyloglutamina

Dodaj komentarz

Twój adres e-mail nie zostanie opublikowany.