Wyniki i dyskusje
Obrazy z mikroskopii świetlnej przedstawiono na ryc. 2. Ciało jest niesegmentowane, o wydłużonym, owalnym kształcie. Dorosłe pasożyty mają cztery pary odnóży. Średnia długość i szerokość samic pasożytów wynosiła 1,13 mm × 0,63 mm. Skaningowa mikroskopia elektronowa wykazała, że tarcza grzbietowa jest wąska i zwęża się ku stronie tylnej, kończąc się tępym wierzchołkiem (ryc. 3a). Na tarczy grzbietowej znajduje się 11 par pilosowatych setae. Długość setek na tarczy grzbietowej jest taka sama jak długość setek na powierzchni otaczającej. Na powierzchni brzusznej samice mają trzy tarcze: mostkową, genitalną i odbytową (ryc. 3b). W skład gnathosomy wchodzi chelicera i pedipalp (Fot. 4a). Chelicera jest długa i spiczasta, co jest bardzo dobrze widoczne w mikroskopie świetlnym, oczyszczonym podczas obróbki laktofenolem (ryc. 2). Każdy trochanter pedipalpa ma przednio-środkowy kil. Tritosternum jest długie i ząbkowane (ryc. 4a). Tarcza przednia ma trzy pary pilosowatych setae (Fig. 4b), z których przednia para znajduje się bliżej przedniej krawędzi tarczy. Tarcza genitalna posiada parę genitalnych setek (Rys. 4b). Tarcza odbytowa ma trzy setae. Odbyt znajduje się w przedniej połowie tarczy odbytowej. W tylnej części tarczy odbytowej znajduje się duża liczba kolców ułożonych w kształt litery V, sięgających tuż przednią częścią końcowego odcinka odbytu (ryc. 4c). Powyższe cechy mikromorfologiczne zaobserwowane za pomocą skaningowej mikroskopii elektronowej są zgodne z opisami innych opublikowanych w literaturze dla O. bacoti Hirst, 1931 (Watson 2008; Soulsby 1982; Engel et al. 1998). Pewne cechy morfologiczne, takie jak owłosienie, spiczasta płytka grzbietowa, typowy kształt płytki odbytowej z czaszkowym odbytem, pozwalają na odróżnienie tropikalnego roztocza szczura od innych blisko spokrewnionych pasożytów, takich jak roztocze ptasznika czerwonego (Dermanyssus gallinae) i nordyckiego (Ornithonyssus sylvarium) (Beck i Fölster-Holst 2009). Niewiele jest doniesień na temat mikroskopii stadiów rozwojowych pasożyta. Jednakże, przegląd cyklu życiowego tego pasożyta autorstwa Engel et al. (1998) dostarcza informacji pozwalających na rozróżnienie wszystkich stadiów rozwojowych, w tym jaj, larwy, protonimfy, deutonimfy i osobnika dorosłego, na podstawie ich cech morfologicznych, takich jak wielkość i liczba odnóży. Skaningowa mikroskopia elektronowa tworzy trójwymiarowy obraz struktury powierzchni obiektu. Ze względu na wyższą zdolność rozdzielczą do 2 milionów razy, w porównaniu do 1000-2000 razy w mikroskopii świetlnej, mikroskopia elektronowa pozwala na badanie struktur mikromorfologicznych niewidocznych w mikroskopii świetlnej. Mikroskopia elektronowa jest jednak droga i wymaga specjalistycznej wiedzy.
Widok z mikroskopii świetlnej powierzchni brzusznej O. bacoti, 40 × (a) oraz gnathosoma pokazująca dwa pedipalpy i długie chelicerae, 100 × (b)
Widok z mikroskopii SEM powierzchni grzbietowej O. bacoti ukazujący tarczę grzbietową i setae (a) oraz powierzchnię brzuszną ukazującą tarczę mostkową, genitalną i odbytową (b)
SEM obraz gnathosomy O. bacoti ukazujący chelicerę i pedipalp (a), tarczę mostkową ukazującą 3 pary pilosowatych setae (b) oraz tarczę odbytową ukazującą 3 setae odbytowe i V-kształtne ułożenie kolców (c)
Kilka gatunków roztoczy, w tym Sarcoptes scabiei, Notoedres cati, Cheyletiella spp, D. gallinae, O. bacoti, Ophionyssus natricis i Neotrombicula autumnalis może zaatakować ludzką skórę, powodując objawy (Beck i Pfister 2006). Roztocza mogą wywoływać świąd lub reakcję alergiczną poprzez białka śliny odkładające się podczas żerowania (Scharf i Daly 2003). Powszechna reakcja nadwrażliwości na wszystkie ukąszenia, użądlenia i produkty stawonogów określana jest jako pokrzywka grudkowa (Steen et al. 2004). Gatunki roztoczy występujące u zwierząt mogą być przyczyną przejściowej infestacji u ludzi. Jedno z takich przejściowych zakażeń u człowieka występuje w przypadku O. bacoti, zwanego inaczej roztoczem szczurzym tropikalnym. O. bacoti jest okresowym pasożytem hematofagicznym i spędza stosunkowo krótki czas na żywicielu. Gdy szczur zostanie złapany w pułapkę lub opuści swoje miejsce bytowania, roztocze może spowodować zarażenie w poszukiwaniu pożywienia. Wykazano, że roztocze szczura tropikalnego występuje w wielu krajach z wyjątkiem regionu arktycznego i antarktycznego (Engel i wsp. 1998).
Przewlekła terapia środkami przeciwpasożytniczymi u ludzi nie jest konieczna, jednak w razie wskazań można zastosować leczenie objawowe (Beck 2007). Różni autorzy donoszą o stosowaniu leków przeciwhistaminowych (Hetherington i wsp. 1971), glikokortykoidów (Fishman 1988), lindanu (Fishman 1988) i 25% benzoesanu benzylu (Tika Ram i wsp. 1986). W naszym przypadku samo leczenie przeciwhistaminowe zastosowaliśmy tylko u kilku pacjentów, ponieważ nasilenie zmian, z którymi się spotkaliśmy, było bardzo małe. Niektórzy pacjenci odczuwali silny świąd, dlatego też przepisano im lek przeciwhistaminowy. Swędzenie ustąpiło po podaniu leku przeciwhistaminowego, a zmiany mają tendencję do ustępowania w krótszym czasie u pacjentów, którym podawano leki przeciwhistaminowe. Powrót do zdrowia przebiegał bez powikłań w ciągu 5-10 dni.
W ośrodku dla zwierząt laboratoryjnych kompleksowy program zwalczania powinien w idealnym przypadku obejmować eliminację rezerwuaru gryzoni komensalnych, leczenie zarażonych zwierząt i ich otoczenia. Jednakże, nie można ignorować ponownego zarażenia w przypadku niepowodzenia programu zwalczania szczurów. Rozbiórki i renowacje budynków lub usuwanie wspólnych gryzoni to okresy szczególnie wysokiego ryzyka, które mogą prowadzić do nowych inwazji roztoczy gryzoni laboratoryjnych, ponieważ roztocza przemieszczają się w poszukiwaniu nowych żywicieli (Watson 2008). Stwierdzono również, że roztocze może przeżyć od 2 tygodni do kilku miesięcy bez żerowania (Baker 1998). Program zwalczania w naszym ośrodku obejmował eliminację rezerwuaru gryzoni commensel w Zakładzie Zwierząt Laboratoryjnych, zastosowanie łatwo dostępnej deltametryny (Butox vet ®), insektycydu z grupy pyretroidów if, do leczenia zarażonej kolonii i jej otoczenia (Nath et al. 2013). Inne leki z grupy pyretroidów, viz. permetryna, syntetyczny pyretroid (Hill et al. 2005, Cole et al. 2005), albo sam lub w połączeniu z deltametryną o przedłużonym uwalnianiu (Watson 2008) były z powodzeniem stosowane w leczeniu infestacji w kolonii myszy laboratoryjnych.
W badaniu tym stwierdzono, że przypadki zapalenia skóry u personelu pracującego w Zakładzie dla Zwierząt Laboratoryjnych były spowodowane ukąszeniami O. bacoti, które pochodziły z zarażonej kolonii myszy. Skaningowa mikroskopia elektronowa była przydatna do potwierdzenia identyfikacji pasożyta na podstawie badań struktur mikromorfologicznych. W Indiach istnieją ograniczone informacje na temat występowania inwazji O. bacoti i zapalenia skóry wywołanego przez O. bacoti. Chociaż nie są dostępne żadne zarejestrowane przypadki, potencjał tego roztocza w przenoszeniu chorób należy traktować poważnie. Leczenie objawowe, w miarę potrzeb, może być pomocne w zmniejszeniu nasilenia świądu.
.